Tvätta cellerna eller vävnaden som studeras med kall fosfatbuffrad -buffrad saltlösning, PBS. Extrahera celler eller bryta upp vävnad i extraktionsbuffert genom att placera blandningen på torr is under 20 minuter och därefter vid rumstemperatur under 10 minuter. Upprepa.
2
Vortex i 10 sekunder. Snurra i en centrifug under 5 minuter för att pelletera cell eller vävnad skräp. Avlägsna supernatanten, den flytande fasen, och placera vätskan i ett rent rör.
3
Filter supernatanten genom ett specialiserat filter för att avlägsna enzymer som kommer fördelningen NADH.
4
bort 200 mikroliter, placera i ett rent rör och värme på 60 grader Celsius i värmeblock i 30 minuter för att denaturera NAD. Kyl och centrifugera och ta bort vätskefasen. Överför 50 mikroliter i en 96-brunnars platta, varje prov bör vara i två eller tre exemplar. För att bestämma total NAD, NADt, inte värme.
5
Förbered och lägg cykling mix av 96-brunnar. Blanda och inkubera i 5 minuter. Lägg 10 mikro liter utvecklare och låt inkubera vid rumstemperatur i upp till 4 timmar. Lägg stop lösning. Läs färgförändring på en tallrik läsare eller fluorimeter beroende på kit.
Standardkurva och Beräkning
6
Bered en standardkurva genom att ta en känd koncentration av NADH och späda den i extraktionsbuffert. Späd i olika koncentrationer, se slutet volymen förblir densamma som proverna. Plate på samma 96-brunnsplatta som testprover. Läs optisk densitet.
7
Rita standardkurva graf med koncentration på X-axeln och optisk densitet på Y-axeln. Ta ett genomsnitt av varje prov och läs koncentrationen från standardkurva grafen.
8
Beräkna NAD /NADH förhållandet genom att subtrahera sammanlagda NAD, NADt, från NADH och sedan dividera med NADH.
Addera ditt
Upphovsrätt © Liv och hälsa