Tvätta cellerna eller vävnad som studeras med kall fosfat salin , PBS. Extrahera cellerna eller bryta upp vävnad i extraktionsbuffert genom att placera blandningen på torr is under 20 minuter och därefter vid rumstemperatur under 10 minuter. Upprepa .
2
Vortex i 10 sekunder . Centrifugera i en centrifug under 5 minuter för att pelletera celler eller vävnadsrester . Avlägsna supernatanten , vätskefas, och placera vätskan i ett rent rör . Addera 3
Filtrera supernatanten genom ett specialiserat filter för avlägsnande av enzymer som kommer att fördelningen NADH.
4
Ta bort 200 mikroliter , rum i ett rent rör och värme på 60 grader i värmeblock i 30 minuter för att denaturera NAD . Kyl och centrifugera och ta bort vätskefasen . Överför 50 mikroliter i en 96 -brunnars platta; Varje prov ska vara i två eller tre exemplar . För att bestämma total NAD , NADt , inte värmer .
5
Förbered och lägg cykling mix i 96 -brunnar . Blanda och inkubera under 5 minuter. Tillsätt 10 mikroliter av framkallare och låt inkubera vid rumstemperatur i upp till 4 timmar. Lägg samlad lösning . Läs färgförändring på en plattläsareeller fluorimeter beroende på kit .
Standardkurva och Beräkning
6
Bered en standardkurva genom att ta en känd koncentration av NADH och späda den i extraktionsbuffert . Späd i olika koncentrationer , se till att slutvolymenär densamma som testprov. Plate på samma 96 -brunnsplatta som testprover. Läs optisk densitet .
7
Rita standardkurva grafen med koncentration på X-axeln och optisk densitet på Y-axeln . Ta ett medelvärde av varje testprov och läsa av koncentrationen från standardkurvan grafen.
8
Beräkna NAD /NADH- förhållandet genom att subtrahera totala NAD , NADt , från NADH och därefter division med NADH.
Addera
Hälsa och Sjukdom © https://www.sjukdom.online